Toma de muestras para el Servicio de Microbiología
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Toma de muestras para el Servicio de Microbiología.

Autor: Enferurg.

 

NORMAS GENERALES

 
  1. Elegir el material que refleje el proceso patológico.
  2. Evitar contaminación con la flora del paciente.
  3. Obtener volumen suficiente para observación microscópica y cultivo.
  4. Obtener la muestra, si es posible, antes de iniciar la terapia antimicrobiana.
  5. Transportar la muestra rápidamente al laboratorio.

 

HEMOCULTIVOS

1.- Recogida.
  • Desinfectar zona de extracción con alcohol 70% y después con alcohol yodado o povidona yodada. Esperar 1 minuto.
  • Desinfectar los tapones de los frascos de hemocultivos con alcohol 70%.
  • Cada toma supone 2 frascos : uno aerobio y otro anaerobio.
  • Extracción deseable en picos febriles
  • En general, 3 tomas espaciadas en 24 horas. En urgencia, 3 tomas cada 15 minutos, de venas diferentes. En F.O.D., 6 tomas en 48 horas.

2.- Volumen de la muestra.

  • Adultos y niños : 6-10 ml (3-5 ml por frasco).
  • Neonatos : 2ml.

3.- Transporte : envío al laboratorio lo antes posible.

4.- Conservación : hasta su envio, mantener a 35-37ºC. si no es posible, a temperatura ambiente. Nunca refrigerar ni congelar.

5.- Observaciones :

  • No son adecuadas las extracciones a través de catéteres y cánulas intravasculares.
  • La relación ideal sangre : caldo de cultivo es de 1:10, a fin de diluir las sustancias bactericidas del suero.

ORINA

1.- Recogida.
  • Micción espontánea.
  • Limpieza de genitales.
  • Parte media de la micción.
  • Sondaje.
  • Punción suprapúbica.
  • Si se utiliza bolsa de plástico adhesiva, no se mantendrá la misma más de 30 minutos.
  • La primera orina de la mañana es la más adecuada.

2.- Volumen de la muestra : 5-10 ml.

3.- Transporte : plazo no superior a 1 hora.

4.- Conservación : a 4ºC, un máximo de 24 horas.

5.- Observaciones :

  • Debe tenerse en cuenta las frecuentes contaminaciones. En general < 50000 colonias/ml  de orina y más de tres gérmenes encontrados indican que la orina está contaminada.
  • La investigación de anaerobios debe hacerse en orinas obtenidas por punción suprapúbica.

HECES

1.- Recogida : 
  • Heces recién emitidas, eligiendo las zonas que contengan sangre, moco o pus.

2.- Volumen de la muestra.

  • Heces formadas o pastosas : al menos 2 g.
  • Heces líquidas : 5-10 ml.

3.- Transporte : deben enviarse en un período inferior a 30 minutos. Si no es posible, se utilizará medio de transporte que será facilitado por el Servicio de Microbiología.

4.- Conservación : las heces preparadas con medio de transporte se mantendrán en nevera (4ºC) hasta su envío, no debiendo superar las 12-18 horas.

5.- Observaciones :

  • Son inadecuadas las heces contaminadas con orina.
  • La relación ideal de medio de transporte y muestra es : 10 ml por gramo de heces.

ESPUTOS

1.- Recogida.
  • Expectoración voluntaria profunda.
  • Procedimientos especiales.
  • Mejor muestra, la matutina.
  • Recipiente estéril.

2.- Volumen de la muestra : 5-10 ml, si es posible.

3.- Transporte : antes de 2 horas desde la obtención.

4.- Conservación : en nevera (4ºC) hasta su procesamiento.

5.- Observaciones :

  • Presencia de células epiteliales en el esputo equivale a contaminación faríngea.
  • A todas las muestras se les efectúa control de calidad por observación microscópica.

HERIDAS, QUEMADURAS, ULCERAS

1.- Recogida.
  • Lavar cuidadosamente la superficie de la lesión.
  • Aspirar con jeringa de la zona profunda. Si se realiza con hisopo, cargarlo bien de material purulento de la zona profunda siendo conveniente el envío de dos hisopos.

2.- Volumen de la muestra.

  • Aspiración : 1-10 ml.
  • Hisopo : la máxima cantidad posible..

3.- Transporte : antes de 2 horas.

4.- Conservación : en caso de demora :

  • Para aislamiento de aerobios refrigerar (4ºC).
  • Para aislamiento de anaerobios enviar una segunda toma y mantenerla a temperatura ambiente.

5.- Observaciones : la recogida con hisopo no es muy eficiente sobre todo si no lleva medio de transporte.

EXUDADOS

1.- Recogida.
  • Nasal : hisopo flexible de alginato o dacrón.
  • Faríngeo : hisopo convencional.
  • Ótico : hisopo de pequeño tamaño.
  • Conjuntival : hisopo alginato cálcico pequeño o dacrón.
  • Vaginal : hisopo alginato cálcico o dacrón.
  • Uretral : hisopo especial.

2.- Volumen de la muestra : la máxima cantidad posible. Es conveniente el envío de 2 hisopos.

3.- Transporte : por regla general, debe ser inmediato.

4.- Conservación : todos los hisopos pueden mantenerse en medio de transporte a temperatura ambiente, salvo los faríngeos que se conservarán en refrigeración (4ºC).

5.- Observaciones :

  • Muestra nasal  está indicada para estudio de portadores de S. aureus y estudio de B. pertutis.
  • En muestras faríngeas, evitar el contacto del hisopo con mucosa oral, lengua o úvula.
  • Muestras óticas se tomarán a través del otoscopio estéril o procedimientos especiales.
  • Muestra conjuntival debe obtenerse antes de aplicar anestésicos locales, colirios o antibióticos.
  • Muestras vaginales y uretrales en medio de transporte, se mantendrán a 35-37ºC.
  • Muestras uretrales deben tomarse, como mínimo, 1 hora después de la última micción.

CATÉTERES

1.- Recogida.
  • Desinfectar la zona de piel correspondiente a la entrada del catéter con alcohol 70%, después con alcohol yodado o povidona yodada, esperar un minito. Retirar el catéter con la máxima asepsia.
  • Con pinzas y tijeras estériles, cortar los 5 cm distales del catéter que corresponden a la zona intravascular.
  • Introducirlo en frasco estéril.

2.- Volumen de la muestra : 5 cm de la porción más distal.

3.- Transporte : envío antes de 30 minutos.

4.- Conservación : mantener en nevera a (4ºC) el menor tiempo posible.

5.- Observaciones :

  • Las sondas de Foley no deben enviarse, salvo que se quiera comprobar la esterilidad de las no utilizadas.

ABSCESOS

1.- Recogida.
  • Desinfectar la piel con alcohol 70%, después con alcohol yodado o povidona yodada. Esperar un minuto.

2.- Volumen de la muestra : 5-10 ml.

3.- Transporte : inmediatamente, una vez se haya expulsado el aire del interior de la jeringa y pinchado la aguja en un tapón de goma estéril.

4.- Conservación : 

  • Inyectar 1-5 ml de la muestra en medio de transporte para anaerobios, dejándolo a temperatura ambiente.
  • Inyectar una parte de la muestra en un frasco de hemocultivo anaerobio y mantener a 35-37ºC o a temperatura ambiente.

5.- Observaciones :

  • Aunque sea posible el uso de hisopos, debe evitarse.
  • Los tapones de goma estéril los suministrará el Servicio de Microbiología.

L.C.R.

1.- Recogida.
  • Punción lumbar.
  • Estricta asepsia.

2.- Volumen de la muestra : 1-10ml.

3.- Transporte : en tubos estériles, antes de 30 minutos.

4.- Conservación : si no es posible el envío, debe hacerse :

  • Mantener a 35-37ºC.
  • Parte del L.C.R. puede inyectarse en un frasco de hemocultivo y mantener a 35-37ºC o a temperatura ambiente de no disponer estufa.
  • Nunca refrigerar ni congelar.

SANGRE (SEROLOGÍA)

1.- Recogida.
  • Extraer sangre periférica en tubo vacutainer de tapón rojo (suero) o de tapón verde (plasma).

2.- Volumen de la muestra : como mínimo 5 ml.

3.- Transporte : tan pronto como sea posible, en el tubo de extracción.

4.- Conservación : en nevera (4ºC), evitando la congelación.

5.- Observaciones :

  • E L.C.R. para el estudio de antígenos y anticuerpos se conservará en nevera y no en estufa (volumen : 1-3 ml).