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Toma de muestras para el Servicio de Microbiología

 

NORMAS GENERALES

 
  1. Elegir el material que refleje el proceso patológico.
  2. Evitar contaminación con la flora del paciente.
  3. Obtener volumen suficiente para observación microscópica y cultivo.
  4. Obtener la muestra, si es posible, antes de iniciar la terapia antimicrobiana.
  5. Transportar la muestra rápidamente al laboratorio.

 

HEMOCULTIVOS

1.- Recogida.
  • Desinfectar zona de extracción con alcohol 70% y después con alcohol yodado o povidona yodada. Esperar 1 minuto.
  • Desinfectar los tapones de los frascos de hemocultivos con alcohol 70%.
  • Cada toma supone 2 frascos : uno aerobio y otro anaerobio.
  • Extracción deseable en picos febriles
  • En general, 3 tomas espaciadas en 24 horas. En urgencia, 3 tomas cada 15 minutos, de venas diferentes. En F.O.D., 6 tomas en 48 horas.

2.- Volumen de la muestra.

  • Adultos y niños : 6-10 ml (3-5 ml por frasco).
  • Neonatos : 2ml.

3.- Transporte : envío al laboratorio lo antes posible.

4.- Conservación : hasta su envio, mantener a 35-37ºC. si no es posible, a temperatura ambiente. Nunca refrigerar ni congelar.

5.- Observaciones :

  • No son adecuadas las extracciones a través de catéteres y cánulas intravasculares.
  • La relación ideal sangre : caldo de cultivo es de 1:10, a fin de diluir las sustancias bactericidas del suero.

ORINA

1.- Recogida.
  • Micción espontánea.
  • Limpieza de genitales.
  • Parte media de la micción.
  • Sondaje.
  • Punción suprapúbica.
  • Si se utiliza bolsa de plástico adhesiva, no se mantendrá la misma más de 30 minutos.
  • La primera orina de la mañana es la más adecuada.

2.- Volumen de la muestra : 5-10 ml.

3.- Transporte : plazo no superior a 1 hora.

4.- Conservación : a 4ºC, un máximo de 24 horas.

5.- Observaciones :

  • Debe tenerse en cuenta las frecuentes contaminaciones. En general < 50000 colonias/ml  de orina y más de tres gérmenes encontrados indican que la orina está contaminada.
  • La investigación de anaerobios debe hacerse en orinas obtenidas por punción suprapúbica.

HECES

1.- Recogida : 
  • Heces recién emitidas, eligiendo las zonas que contengan sangre, moco o pus.

2.- Volumen de la muestra.

  • Heces formadas o pastosas : al menos 2 g.
  • Heces líquidas : 5-10 ml.

3.- Transporte : deben enviarse en un período inferior a 30 minutos. Si no es posible, se utilizará medio de transporte que será facilitado por el Servicio de Microbiología.

4.- Conservación : las heces preparadas con medio de transporte se mantendrán en nevera (4ºC) hasta su envío, no debiendo superar las 12-18 horas.

5.- Observaciones :

  • Son inadecuadas las heces contaminadas con orina.
  • La relación ideal de medio de transporte y muestra es : 10 ml por gramo de heces.

ESPUTOS

1.- Recogida.
  • Expectoración voluntaria profunda.
  • Procedimientos especiales.
  • Mejor muestra, la matutina.
  • Recipiente estéril.

2.- Volumen de la muestra : 5-10 ml, si es posible.

3.- Transporte : antes de 2 horas desde la obtención.

4.- Conservación : en nevera (4ºC) hasta su procesamiento.

5.- Observaciones :

  • Presencia de células epiteliales en el esputo equivale a contaminación faríngea.
  • A todas las muestras se les efectúa control de calidad por observación microscópica.

HERIDAS, QUEMADURAS, ULCERAS

1.- Recogida.
  • Lavar cuidadosamente la superficie de la lesión.
  • Aspirar con jeringa de la zona profunda. Si se realiza con hisopo, cargarlo bien de material purulento de la zona profunda siendo conveniente el envío de dos hisopos.

2.- Volumen de la muestra.

  • Aspiración : 1-10 ml.
  • Hisopo : la máxima cantidad posible..

3.- Transporte : antes de 2 horas.

4.- Conservación : en caso de demora :

  • Para aislamiento de aerobios refrigerar (4ºC).
  • Para aislamiento de anaerobios enviar una segunda toma y mantenerla a temperatura ambiente.

5.- Observaciones : la recogida con hisopo no es muy eficiente sobre todo si no lleva medio de transporte.

EXUDADOS

1.- Recogida.
  • Nasal : hisopo flexible de alginato o dacrón.
  • Faríngeo : hisopo convencional.
  • Ótico : hisopo de pequeño tamaño.
  • Conjuntival : hisopo alginato cálcico pequeño o dacrón.
  • Vaginal : hisopo alginato cálcico o dacrón.
  • Uretral : hisopo especial.

2.- Volumen de la muestra : la máxima cantidad posible. Es conveniente el envío de 2 hisopos.

3.- Transporte : por regla general, debe ser inmediato.

4.- Conservación : todos los hisopos pueden mantenerse en medio de transporte a temperatura ambiente, salvo los faríngeos que se conservarán en refrigeración (4ºC).

5.- Observaciones :

  • Muestra nasal  está indicada para estudio de portadores de S. aureus y estudio de B. pertutis.
  • En muestras faríngeas, evitar el contacto del hisopo con mucosa oral, lengua o úvula.
  • Muestras óticas se tomarán a través del otoscopio estéril o procedimientos especiales.
  • Muestra conjuntival debe obtenerse antes de aplicar anestésicos locales, colirios o antibióticos.
  • Muestras vaginales y uretrales en medio de transporte, se mantendrán a 35-37ºC.
  • Muestras uretrales deben tomarse, como mínimo, 1 hora después de la última micción.

CATÉTERES

1.- Recogida.
  • Desinfectar la zona de piel correspondiente a la entrada del catéter con alcohol 70%, después con alcohol yodado o povidona yodada, esperar un minito. Retirar el catéter con la máxima asepsia.
  • Con pinzas y tijeras estériles, cortar los 5 cm distales del catéter que corresponden a la zona intravascular.
  • Introducirlo en frasco estéril.

2.- Volumen de la muestra : 5 cm de la porción más distal.

3.- Transporte : envío antes de 30 minutos.

4.- Conservación : mantener en nevera a (4ºC) el menor tiempo posible.

5.- Observaciones :

  • Las sondas de Foley no deben enviarse, salvo que se quiera comprobar la esterilidad de las no utilizadas.

ABSCESOS

1.- Recogida.
  • Desinfectar la piel con alcohol 70%, después con alcohol yodado o povidona yodada. Esperar un minuto.

2.- Volumen de la muestra : 5-10 ml.

3.- Transporte : inmediatamente, una vez se haya expulsado el aire del interior de la jeringa y pinchado la aguja en un tapón de goma estéril.

4.- Conservación : 

  • Inyectar 1-5 ml de la muestra en medio de transporte para anaerobios, dejándolo a temperatura ambiente.
  • Inyectar una parte de la muestra en un frasco de hemocultivo anaerobio y mantener a 35-37ºC o a temperatura ambiente.

5.- Observaciones :

  • Aunque sea posible el uso de hisopos, debe evitarse.
  • Los tapones de goma estéril los suministrará el Servicio de Microbiología.

L.C.R.

1.- Recogida.
  • Punción lumbar.
  • Estricta asepsia.

2.- Volumen de la muestra : 1-10ml.

3.- Transporte : en tubos estériles, antes de 30 minutos.

4.- Conservación : si no es posible el envío, debe hacerse :

  • Mantener a 35-37ºC.
  • Parte del L.C.R. puede inyectarse en un frasco de hemocultivo y mantener a 35-37ºC o a temperatura ambiente de no disponer estufa.
  • Nunca refrigerar ni congelar.

SANGRE (SEROLOGÍA)

1.- Recogida.
  • Extraer sangre periférica en tubo vacutainer de tapón rojo (suero) o de tapón verde (plasma).

2.- Volumen de la muestra : como mínimo 5 ml.

3.- Transporte : tan pronto como sea posible, en el tubo de extracción.

4.- Conservación : en nevera (4ºC), evitando la congelación.

5.- Observaciones :

  • E L.C.R. para el estudio de antígenos y anticuerpos se conservará en nevera y no en estufa (volumen : 1-3 ml).

 

 

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